ADN cloroplástico

Na Galipedia, a Wikipedia en galego.
(Redirixido desde "Xenoma do cloroplasto")
Saltar ata a navegación Saltar á busca

O ADN cloroplástico ou ADNcp (en inglés abréviase como cpDNA ou ctDNA[1][2]) é o ADN propio que conteñen os cloroplastos.[3] O seu contido xenético é o plastoma. A súa existencia foi demostrada en 1962,[4] e foi secuenciado por primeira vez en 1986 por dous equipos de investigadores xaponeses que estudaban o ADN cloroplástico das hepáticas e da planta do tabaco.[5] Desde entón, secuenciáronse centos de ADNs procedentes de cloroplastos de varias especies, que son principalmente plantas terrestres e algas verdes, mentres que os ADNcp de glaucófitas, algas vermellas, e outros grupos de algas están moi subrepresentados nestas análises, o que potencialmente introduce un certo nesgo na nosa idea do que é a estrutura e contido dun ADNcp "típico".[6]

Estrutura molecular[editar | editar a fonte]

Os ADNs cloroplásticos son circulares (pero tamén se atoparon linerares.[7]), e dunha lonxitude típica de entre 120.000 e 170.000 pares de bases.[4][8][9] A lonxitude da súa circunferencia pode chegar a 30–60 micrómetros, e teñen unha masa duns 80 a 130 millóns de daltons.[10]

A maioría dos cloroplastos teñen todo o xenoma do orgánulo nun só anel grande, aínda que os das algas dinófitas son unha notable excepción, pois os seus xenomas están repartidos nuns 40 pequenos plásmidos, cada un entre 2.000 e 10.000 pares de bases.[6] Cada un destes minicírculos contén de un a tres xenes,[6][11] pero tamén se atoparon plásmidos sen xenes, é dicir, sen ADN codificante.

Repeticións invertidas[editar | editar a fonte]

Moitos ADNs cloroplásticos conteñen dúas repeticións invertidas, as cales separan unha sección de copia simple longa (LSC) dunha sección de copia simple curta (SSC).[9]

As repeticións invertidas varían enormemente en lonxitude, e poden oscilar entre os 4.000 e os 25.000 pares de bases cada unha.[6] As repeticións invertidas nas plantas adoitan estar no extremo superior dese intervalo, e ser de entre 20.000 e 25.000 pares de base cada unha.[9][12] As rexións repetidas invertidas xeralmente conteñen tres xenes de ARNs ribosómicos e dous de ARNts, pero poden ser expandidas ou reducidas e así conteñen desde só 4 ata 150 xenes.[6] Aínda que un determinado par de inversións repetidas raramente son completamente idénticas, sempre son moi similares, o que aparentemente é resultado dunha evolución converxente.[6]

As rexións repetidas invertidas están moi conservadas entre as plantas terrestres, e acumulan poucas mutacións.[9][12] Hai repeticións invertidas similares nos xenomas de cianobacterias e as outras dúas liñaxes de cloroplastos (os das glaucófitas e rodofíceas), o que suxire que son anteriores aos cloroplastos,[6] aínda que algúns ADNs de cloroplastos como os dos chícharos e dunhas poucas algas vermellas[6] perderon as súas repeticións invertidas.[12][13] Noutros casos, como a alga vermella Porphyra, déuselle a volta a unha das súas inversións repetidas (o que as converte en repeticións directas).[6] É posible que as inversioóns repetidas axuden a estabilizar o resto do xenoma do cloroplasto, xa que os ADNs cloroplásticos que perderon algúns dos seus segmentos das inversións repetidas tenden a reorganizarse máis.[13]

Estrutura linear[editar | editar a fonte]

A idea tradicional sobre a estrutura dos ADNcp é que son caracteristicamente circulares, pero algunhas probas máis recentes suxiren que poden ser tamén lineares e mesmo que isto pode ser o máis común en moitas especies.[7] Por exemplo, aproximadamente o 95% do ADN dos cloroplastos do millo son lineares ramificados en vez de círculos individuais.[6]

Nucleoides e copias do ADNcp[editar | editar a fonte]

Os cloroplastos de nova formación poden conter ata 100 copias do seu ADN,[4] aínda que o número de copias de ADN do cloroplasto diminúe ata unhas 15–20 a medida que aumenta a idade do cloroplasto.[14] Xeralmente as copias están empaquetadas en nucleoides que poden conter varios aneis de ADNcp idénticos. En cada cloroplasto poden atoparse moitos nucleoides.[10]

Aínda que o ADNcp non está asociado con verdadeiras histonas,[15] nas algas vermellas atopouse unha proteína cloroplástica similar a unha histona (HC) codificada polo ADNcp que empaqueta apertadamente os aneis de ADNcp nun nucleoide.[16]

En algas vermellas primitivas, os nucleoides de ADN cloroplástico están agrupados no centro do cloroplasto, mentres que nas plantas e algas verdes, os nucleoides están dispersos polo estroma.[16]

Contido de xenes e síntese proteica[editar | editar a fonte]

O xenoma do cloroplasto normalmente inclúe uns 100 xenes[8][11] que codifican produtos con diversas funcións, principalmente relacionadas coa síntese de proteínas e a fotosíntese. Igual que en procariotas, os xenes do ADNcp están organizados en operóns.[11] Porén, os intróns son comúns nas moléculas de ADNcp, aínda que son raros en ADN de procariotas (o ADN mitocondrial das plantas normalmente ten intróns, pero non o ADN mitocondrial humano).[17]

Nas plantas terrestres, os contidos do xenoma do cloroplasto son bastante similares[9] e codifican catro ARN ribosómicos, 30 ou 31 ARNts, 21 proteínas ribosómicas, e catro subunidades de ARN polimerase,[18][19] implicadas na síntese de proteínas. En relación coa fotosíntese, o ADNcp inclúe xenes para 28 proteínas dos tilacoides e a subunidade grande da Rubisco.[18] Ademais, o ADNcp codifica once subunidades dun complexo proteico que é mediador de reaccións redox nas que se reciclan electróns,[20] o cal é similar á NADH deshidroxenase que se encontra na mitocondria.[18][21]

Redución do xenoma do cloroplasto e transferencia de xenes[editar | editar a fonte]

Co tempo, no proceso da endosimbiose, moitas partes do xenoma do cloroplasto foron transferidas ao xenoma nuclear da célula hóspede,[4][8][22] un proceso que se denomina transferencia de xenes endosimbiótica. Como resultado, o xenoma do cloroplasto foi fortemente reducido en comparación co dunha cianobacteria de vida libre. Os cloroplastos poden conter de 60 a 100 xenes, mentres que as cianobacterias a miúdo teñen máis de 1500 xenes nos seus xenomas.[23]

A transferencia de xenes endosimbiótica é tamén como se cre que se produciu a perda dos cloroplastos en moitas liñaxes de cromalveolados. Pero, aínda que se perdan os cloroplastos, os xenes que o cloroplasto cedeu ao núcleo do hóspede persisten, o que é unha proba da anterior exeistencia deses cloroplastos desaparecidos. Por exemplo, mentres que as diatomeas (unhas heterocontófitas) teñen actualmente un cloroplasto derivado de algas vermellas, a presenza de moitos xenes de algas verdes no ADN nuclear das diatomeas é unha proba de que os antepasados das diatomeas (probablemente o antepasado de todos os cromalveolados) tivo nalgún momento un cloroplasto derivado de algas verdes, o cal foi despois substituído por un cloroplasto de algas vermellas.[24]

Nas plantas terrestres, un 11–14% do ADN dos seus núcleos pode ser identificado como de orixe cloroplástica,[25] e chega ao 18% en Arabidopsis thaliana, o que supón uns 4.500 xenes codificantes de proteínas.[26] Houbo tamén algúns casos recentes de transferencias de xenes desde o cloroplasto ao ADN nuclear nas plantas terrestres.[8]

A transferencia de xenes foi tan grande que das aproximadamente 3.000 proteínas que se atopan nos cloroplastos, un 95% delas están codificadas en xenes nucleares. Moitos dos complexos proteicos dos cloroplastos constan de subunidades procedentes tanto do xenoma cloroplástico coma do xenoma nuclear. Como resultado, a síntese de proteínas debe estar coordinada entre o núcleo e o cloroplasto. O cloroplasto está principalmente baixo o control nuclear, aínda que os cloroplastos poden tamén enviar sinais que regulan a expresión xénica no núcleo, o que se chama sinalización retrógrada.[27]

Síntese de proteínas[editar | editar a fonte]

A síntese proteica nos cloroplastos depende dunha ARN polimerase codificada no propio xenoma do cloroplasto, que está relacionada coas ARN polimerases que se atopan en bacterias. Os cloroplastos tamén conteñen unha segunda ARN polimerase misteriosa que está codificada polo xenoma nuclear da planta. As dúas ARN polimerases poden recoñecer e unirse a diferentes tipos de promotores do xenoma do cloroplasto.[28] Os ribosomas do cloroplasto son similares aos ribosomas bacterianos.[18]

Destino e importación de proteínas ao cloroplasto[editar | editar a fonte]

O movemento que se produciu na evolución de moitos xenes cloroplásticos ao núcleo tivo como consecuencia que moitas proteínas que orixinalmente se traducían no cloroplasto agora tradúcense no citoplasma. Isto significa que estas proteínas deben ser dirixidas despois ao cloroplasto, e importadas atravesando as dúas membranas que envolven o cloroplasto (ou máis de dúas en certas endosimbioses).[29]

Curiousamente, arredor da metade dos produtos proteicos dos xenes transferidos non son nin tan sequera dirixidos aos cloroplastos, xa que moitas se converteron no que se chama exaptacións, e adoptaron novas funcións como participar na división celular, asignación de rutas das proteínas (protein routing), e mesmo resistencia a enfermidades. Uns poucos xenes de cloroplastos establecéronse no xenoma mitocondrial, a maioría convertéronse alí en pseudoxenes non funcionais, aínda que uns poucos xenes de ARNts aínda son funcionais nas mitocondrias.[23] Algúns produtos proteicos do ADNcp transferido son dirixidos á vía secretora[23] (aínda que debe terse en conta que moitos plástidos secundarios están rodeados por unha membrana externa derivada da membrana plasmática da célula, e, por tanto, están topoloxicamente fóra da célula, porque para chegar ao cloroplasto desde o citosol, hai que cruzar esta "membrana plasmática", igual que se se viñese desde o espazo extracelular. Neses casos, as proteínas dirixidas ao cloroplasto viaxan inicialmente a través da vía secretora).[30]

Como as células que adquiriron un cloroplasto xa tiñan mitocondrias (e peroxisomas, e unha membrana plasmática para a secreción), o hóspede deste novo cloroplasto tivo que desenvolver un sistema para marcar o destino ao que se envían as proteínas exclusivo para evitar que as proteínas do cloroplasto fosen enviadas a un orgánulo equivocado, e que se enviasen ao cloroplasto proteínas indebidas.[29]

Tradución citoplasmática e secuencias de tránsito N-terminais[editar | editar a fonte]

Polipéptido formado por catro aminoácidos. Á esquerda está o seu extremo N-terminal co grupo amino (H2N) de verde. Á dereita o extremo C-terminal co grupo carboxilo (CO2H) de azul.

Os polipéptidos, precursores das proteínas, son cadeas de aminoácidos. Os dous extremos dun polipéptido denomínanse N-terminal, ou extremo amino, e C-terminal, ou extremo carboxilo.[31] A moitas das proteínas cloroplásticas (pero non a todas)[32] codificadas nos xenes nucleares, engádenselles péptidos de tránsito clivables no extremo N-terminal dos polipéptidos, que se utilizan para axudar a dirixir o polipéptido ao cloroplasto para que sexa importado ao seu interior[29][33] (os péptidos de tránsito N-terminais tamén se utilizan para dirixir polipéptidos ás mitocondrias das plantas).[34] As secuencias de tránsito N-terminais tamén se chaman presecuencias[29] porque están localizadas no extremo "dianteiro" do polipéptido (os ribosomas sintetizan os polipéptidos desde o extremo N-terminal ao C-terminal).[31]

Os péptidos (secuencias) de tránsito cloroplásticos presentan unha grande variación en canto á súa lonxitude e secuencia de aminoácidos.[33] Poden ter unha lonxitude entre os 20 e os 150 aminoácidos,[29] o que é inusualmente longa, o que indica que os péptidos de tránsito son en realidade a reunión de varios dominios proteicos con diferentes funcións.[33] Os péptidos de tránsito tenden a estar cargados positivamente,[29] e son ricos en aminoácidos hidroxilados como a serina, treonina, e prolina, e pobres en aminoácidos ácidos como o ácido aspártico e o ácido glutámico.[33] En solución acuosa, as secuencias de tránsito forman un enrolamento aleatorio.[29]

Non todas as proteínas destinadas ao cloroplasto teñen unha secuencia de tránsito clivable N-terminal.[29] Algunhas presentan a secuencia de tránsito duntro dunha parte funcional da proteína.[29] Hai tamén unha cantas que teñen as súas secuencias de tránsito unidas ao seu extremo C-terminal.[35] A maioría dos polipéptidos que carecen de secuencias N-terminais que marcan o seu destino son aquelas que son enviadas á membrana cloroplástica externa, xunto con polo menos unha que se sabe que é enviada á membrana cloroplástica interna.[29]

Fosforilación, chaperonas, e transporte[editar | editar a fonte]

Despois de que un polipéptido cloroplástico se sintetiza nun ribosoma citosólico, pode utilizarse ATP para fosforilar (engadir un grupo fosfato) moitos deses polipéptidos (pero non todos) nas súas secuencias de tránsito.[29] Os aminoácidos que reciben eses grupos fosfato son con frecuencia a serina a a treonina (dous aminoácidos moi comúns nas secuencias de tránsito, que supoñen o 20–30% da secuencia)[34][36][36] O encima proteína quinase que leva a cabo a fosforilación é específico para os polipéptidos cloroplásticos, e ignora os que van destinados ás mitocondrias ou peroxisomas.[36]

A fosforilación cambia a forma do polipéptido,[36] facendo que sexa máis fácil para as proteínas 14-3-3 unirse ao polipéptido.[29][37] Nas plantas as proteínas 14-3-3 só se unen a preproteínas cloroplásticas.[34] Tamén se une aos polipéptidos a proteína de choque térmico Hsp70 (unha chaperona), que evita que o polipéptido se pregue prematuramente.[29] Isto é importante porque impide que as proteínas do cloroplasto adopten a súa forma activa e leven a cabo as súas funcións cloroplásticas no lugar equivocado, o citosol.[34][37] Ao mesmo tempo, deben manter unha forma o suficientemente recoñecible como para ser importadas ao cloroplasto.[34]

As proteínas de choque térmico e as proteínas 14-3-3 constitúen xuntas un complexo de guía citosólico que fai máis doada a importación destes polipéptidos ao cloroplasto.[29]

Alternativamente, se un péptido de tránsito de preproteína cloroplástica non está fosforilado, unha preproteína cloroplástica pode unirse de todos modos a unha proteína de choque térmico ou ao Toc159. Estes complexos poden unirse ao complexo TOC da membrana cloroplástica externa utilizando a enerxía do GTP,[29] a través do cal atravesan a membrana cloroplástica externa. Despois, as proteínas atravesan a membrana cloroplástica interna a traves do complexo TIC. Os complexos TIC e TOC son translocóns especializados.

Artigo principal: Complexos TIC e TOC.

O translocón da membrana cloroplástica externa (TOC)[editar | editar a fonte]

O complexo TOC, ou translocón da membrana externa (do inglés translocon on the outer chloroplast membrane), é un conxunto de proteína que importa preproteínas a través da envoltura cloroplástica externa. No complexo TOC identificáronse cinco subunidades proteicas, dúas son as proteínas que se unen ao GTP Toc34 e Toc159, outra é o túnel de importación de proteínas Toc75, e as outras dúas son as proteínas Toc64[29] e Toc12.[32]

O translocón da membrana cloroplástica interna (TIC)[editar | editar a fonte]

O translocón TIC, ou translocon on the inner chloroplast membrane[29] é outro complexo proteico que importa proteínas a través da envoltura cloroplástica interna. As cadeas de polipéptidos cloroplásticos probablemente adoitan viaxar a través dos dous complexos á vez, pero os complexos TIC poden tamén recuperar preproteínas perdidas no espazo intermembrana do cloroplasto.[29]

Igual que o translocón TOC, o translocón TIC ten un grande complexo proteico central rodeado dalgunhas proteínas periféricas feblemente asociadas a el como Tic110, Tic40, e Tic21.[38] O complexo central pesa aproximadamente un millón de daltons e contén as proteínas Tic214, Tic100, Tic56, e Tic20 I, posiblemente tres unidades de cada unha.[38]

Notas[editar | editar a fonte]

  1. "ctDNA — chloroplast DNA". AllAcronyms.com. Consultado o 2 January 2013. 
  2. The Oxford Dictionary of Abbreviations. ctDNA—Dictionary definition. 1998. 
  3. C.Michael Hogan. 2010. Deoxyribonucleic acid. Encyclopedia of Earth. National Council for Science and the Environment. eds. S.Draggan and C.Cleveland. Washington DC
  4. 4,04,14,24,3 Dann, Leighton (2002). Bioscience—Explained (PDF). Green DNA: BIOSCIENCE EXPLAINED. 
  5. "Chloroplasts and Other Plastids". University of Hamburg. Arquivado dende o orixinal o 25 de setembro de 2012. Consultado o 27 December 2012. 
  6. 6,06,16,26,36,46,56,66,76,86,9 Sandelius, Anna Stina (2009). The Chloroplast: Interactions with the Environment. Springer. p. 18. ISBN 978-3-540-68696-5. 
  7. 7,07,1 Bendich, A. J. (2004). "Circular Chloroplast Chromosomes: The Grand Illusion". The Plant Cell Online 16 (7): 1661–6. PMC 514151. PMID 15235123. doi:10.1105/tpc.160771. 
  8. 8,08,18,28,3 Clegg, M. T.; Gaut, BS; Learn Jr, GH; Morton, BR (1994). "Rates and Patterns of Chloroplast DNA Evolution". Proceedings of the National Academy of Sciences 91 (15): 6795–801. Bibcode:1994PNAS...91.6795C. PMC 44285. PMID 8041699. doi:10.1073/pnas.91.15.6795. 
  9. 9,09,19,29,39,4 Shaw, J.; Lickey, E. B.; Schilling, E. E.; Small, R. L. (2007). "Comparison of whole chloroplast genome sequences to choose noncoding regions for phylogenetic studies in angiosperms: The tortoise and the hare III". American Journal of Botany 94 (3): 275–88. PMID 21636401. doi:10.3732/ajb.94.3.275. 
  10. 10,010,1 Burgess, Jeremy (1989). An introduction to plant cell development. Cambridge: Cambridge university press. p. 62. ISBN 0-521-31611-1. 
  11. 11,011,111,2 McFadden, G. I. (2001). "Chloroplast Origin and Integration". Plant Physiology 125 (1): 50–3. PMC 1539323. PMID 11154294. doi:10.1104/pp.125.1.50. 
  12. 12,012,112,2 Kolodner, R.; Tewari, KK (1979). "Inverted Repeats in Chloroplast DNA from Higher Plants". Proceedings of the National Academy of Sciences 76 (1): 41–5. Bibcode:1979PNAS...76...41K. PMC 382872. PMID 16592612. doi:10.1073/pnas.76.1.41. 
  13. 13,013,1 Palmer, Jeffrey D.; Thompson, William F. (1982). "Chloroplast DNA rearrangements are more frequent when a large inverted repeat sequence is lost". Cell 29 (2): 537–50. PMID 6288261. doi:10.1016/0092-8674(82)90170-2. 
  14. Plant Biochemistry (3rd ed.). Academic Press. 2005. p. 517. ISBN 9780120883912. 
  15. Biology 8th Edition Campbell & Reece. Benjamin Cummings (Pearson). 2009. p. 516. 
  16. 16,016,1 Kobayashi, T.; Takahara, M; Miyagishima, SY; Kuroiwa, H; Sasaki, N; Ohta, N; Matsuzaki, M; Kuroiwa, T (2002). "Detection and Localization of a Chloroplast-Encoded HU-Like Protein That Organizes Chloroplast Nucleoids". The Plant Cell Online 14 (7): 1579–89. PMC 150708. PMID 12119376. doi:10.1105/tpc.002717. 
  17. Alberts, Bruce (2002). Molecular biology of the cell (4. ed.). New York [u.a.]: Garland. ISBN 0-8153-4072-9. 
  18. 18,018,118,218,3 Harris, EH; Boynton, JE; Gillham, NW (1994). "Chloroplast ribosomes and protein synthesis". Microbiological reviews 58 (4): 700–54. PMC 372988. PMID 7854253. 
  19. Wakasugi, T.; Sugita, M.; Tsudzuki, T.; Sugiura, M. (1998). "Updated gene map of tobacco chloroplast DNA". Plant Molecular Biology Reporter 16 (3): 231–41. doi:10.1023/A:1007564209282. 
  20. Krause, Kirsten (2008). "From chloroplasts to "cryptic" plastids: Evolution of plastid genomes in parasitic plants". Current Genetics 54 (3): 111–21. PMID 18696071. doi:10.1007/s00294-008-0208-8. 
  21. Peng, L.; Fukao, Y.; Fujiwara, M.; Shikanai, T. (2012). "Multistep Assembly of Chloroplast NADH Dehydrogenase-Like Subcomplex a Requires Several Nucleus-Encoded Proteins, Including CRR41 and CRR42, in Arabidopsis". The Plant Cell 24 (1): 202–14. PMC 3289569. PMID 22274627. doi:10.1105/tpc.111.090597. 
  22. Huang, Chun Y.; Ayliffe, Michael A.; Timmis, Jeremy N. (2003). "Direct measurement of the transfer rate of chloroplast DNA into the nucleus". Nature 422 (6927): 72–6. Bibcode:2003Natur.422...72H. PMID 12594458. doi:10.1038/nature01435. 
  23. 23,023,123,2 Martin, W.; Rujan, T; Richly, E; Hansen, A; Cornelsen, S; Lins, T; Leister, D; Stoebe, B; Hasegawa, M; Penny, D (2002). "Evolutionary analysis of Arabidopsis, cyanobacterial, and chloroplast genomes reveals plastid phylogeny and thousands of cyanobacterial genes in the nucleus". Proceedings of the National Academy of Sciences 99 (19): 12246–51. Bibcode:2002PNAS...9912246M. PMC 129430. PMID 12218172. doi:10.1073/pnas.182432999. 
  24. Moustafa, Ahmed; Beszteri, Bánk; Maier, Uwe G.; Bowler, Chris; Valentin, Klaus; Bhattacharya, Debashish (2009). "Genomic Footprints of a Cryptic Plastid Endosymbiosis in Diatoms". Science 324 (5935): 1724–6. Bibcode:2009Sci...324.1724M. PMID 19556510. doi:10.1126/science.1172983. 
  25. Nowack, E. C. M.; Vogel, H.; Groth, M.; Grossman, A. R.; Melkonian, M.; Glöckner, G. (2010). "Endosymbiotic Gene Transfer and Transcriptional Regulation of Transferred Genes in Paulinella chromatophora". Molecular Biology and Evolution 28 (1): 407–22. PMID 20702568. doi:10.1093/molbev/msq209. 
  26. Archibald, John M. (2006). "Algal Genomics: Exploring the Imprint of Endosymbiosis". Current Biology 16 (24): R1033–5. PMID 17174910. doi:10.1016/j.cub.2006.11.008. 
  27. Koussevitzky, Shai; Nott, A; Mockler, TC; Hong, F; Sachetto-Martins, G; Surpin, M; Lim, J; Mittler, R; Chory, J (2007). "Signals from Chloroplasts Converge to Regulate Nuclear Gene Expression". Science 316 (5825): 715–9. Bibcode:2007Sci...316..715K. PMID 17395793. doi:10.1126/science.1140516 (inactivo 2014-02-01). 
  28. Hedtke, B.; Börner, T; Weihe, A (1997). "Mitochondrial and Chloroplast Phage-Type RNA Polymerases in Arabidopsis". Science 277 (5327): 809–11. PMID 9242608. doi:10.1126/science.277.5327.809. 
  29. 29,0029,0129,0229,0329,0429,0529,0629,0729,0829,0929,1029,1129,1229,1329,1429,1529,1629,17 Soll, Jürgen; Schleiff, Enrico (2004). "Plant cell biology: Protein import into chloroplasts". Nature Reviews Molecular Cell Biology 5 (3): 198–208. PMID 14991000. doi:10.1038/nrm1333. 
  30. Keeling, P. J. (2010). "The endosymbiotic origin, diversification and fate of plastids". Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences 365 (1541): 729–48. PMC 2817223. PMID 20124341. doi:10.1098/rstb.2009.0103. 
  31. 31,031,1 Biology 8th edition—Campbell & Reece. Benjamin Cummings. 2008. p. 340. ISBN 978-0-321-54325-7. 
  32. 32,032,1 Wise, Robert R.; Hoober, J. Kenneth (2007). Structure and function of plastids. Berlin: Springer. pp. 53–74. ISBN 978-1-4020-6570-5. 
  33. 33,033,133,233,3 Lee, D. W.; Lee, S; Lee, GJ; Lee, KH; Kim, S; Cheong, GW; Hwang, I (2006). "Functional Characterization of Sequence Motifs in the Transit Peptide of Arabidopsis Small Subunit of Rubisco". Plant Physiology 140 (2): 466–83. PMC 1361317. PMID 16384899. doi:10.1104/pp.105.074575. 
  34. 34,034,134,234,334,4 May, T. (2000). "14-3-3 Proteins Form a Guidance Complex with Chloroplast Precursor Proteins in Plants". The Plant Cell Online 12: 53. doi:10.1105/tpc.12.1.53. 
  35. Lung, S.-C.; Chuong, S. D. X. (2012). "A Transit Peptide-Like Sorting Signal at the C Terminus Directs the Bienertia sinuspersici Preprotein Receptor Toc159 to the Chloroplast Outer Membrane". The Plant Cell 24 (4): 1560–78. PMC 3398564. PMID 22517318. doi:10.1105/tpc.112.096248. 
  36. 36,036,136,236,3 Soll, J r.; Soll, J (1996). "Phosphorylation of the Transit Sequence of Chloroplast Precursor Proteins". Journal of Biological Chemistry 271 (11): 6545–54. PMID 8626459. doi:10.1074/jbc.271.11.6545. 
  37. 37,037,1 Jarvis, Paul; Soll, Jürgen (2001). "Toc, Tic, and chloroplast protein import". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Cell Research 1541 (1–2): 64–79. PMID 11750663. doi:10.1016/S0167-4889(01)00147-1. 
  38. 38,038,1 Kikuchi, Shingo; Bédard, Jocelyn; Hirano, Minako; Hirabayashi, Yoshino; Oishi, Maya; Imai, Midori; Takase, Mai; Ide, Toru; Nakai, Masato (2013). "Uncovering the Protein Translocon at the Chloroplast Inner Envelope Membrane". Science 339 (6119): 571–4. Bibcode:2013Sci...339..571K. PMID 23372012. doi:10.1126/science.1229262. 

Véxase tamén[editar | editar a fonte]

Outros artigos[editar | editar a fonte]

Traído desde "https://gl.wikipedia.org/w/index.php?title=ADN_cloroplástico&oldid=4842323"